QuantUNAB
Vol. 1, Núm. 1, e12, enero-junio, 2022
e-ISSN: 2664-3014
DOI: 10.52807/qunab.v1i1.12
Recibido: 24/11/2021. Aprobado: 23/12/2021. Publicado: 25/01/2022 Licencia Creative Commons Atribución 4.0 Internacional
*Moisés N. Pineda-Cotrina - mpinedac151@unab.edu.pe (autor de correspondencia)
© Copyright 2022. Universidad Nacional de Barranca
Artículo Original | Original Article
Efecto de la aplicación de ácidos húmicos, microorganismos
eficaces y Trichoderma asperellum, T. viride y T. harzianum en
Capcicum annun
Effect of the application of humic acids, effective microorganisms and Trichoderma
asperellum, T. viride and T. harzianum on Capcicum annun
Moisés Nelson Pineda-Cotrina1*; Cesar Guillermo Ramírez-Rojas1; Lincol Emerson Pineda-Reyes1;
Herminda Kimberly Gonzales-Medina1; Yoni Yulmer Zenobio-Tolentino1; Oliver Francli Rimac-
Torres1; Jorge Alberto Agurto-Isidro1; Gregorio José Arone-Gaspar1
1Universidad Nacional de Barranca, Lima, Perú
RESUMEN
En Araya Grande - Barranca, la páprika (Capsicum annuum L.) cv. Papri King se cultiva en suelos en proceso de
degradación; hoy en día, para una buena cosecha, se utilizan altas dosis de fertilizantes y el uso constante de
pesticidas tóxicos. El presente estudio tuvo como objetivo evaluar el efecto de la aplicación de ácidos húmicos co-
inoculado con microorganismos eficaces y Trichoderma asperellum, T. viride y T. harzianum en el crecimiento de
páprika en un suelo degradado. El experimento se instaló en el Centro de Investigación Los Anitos, en condiciones
de casa malla, en macetas de 5 (l), bajo un diseño al azar, con 5 tratamientos y 6 repeticiones. Se evaluó la altura de
planta, materia seca foliar y radicular a 60 días después del trasplante. Las variables estudiadas presentaron
diferencias estadísticas para la prueba de Tukey (α=0,05). Los tratamientos T1, T2, T3 y T4 presentaron incrementos
frente al testigo (T5) en 25,54%, 17,35%, 14,66% y 12,83% para altura de planta; 88,26%, 48,28%, 34,54% y 16,03%
para biomasa foliar y de 45,43%, 30,48%, 25,45% y 22,85% para la biomasa radicular. Además, no se observó
pudrición radicular en T1, T2, T3 y T4 hasta el período de evaluación. Los insumos utilizados favorecieron el
crecimiento foliar, radicular, altura de planta, protegiéndolos de daños de pudrición radicular.
Palabras clave: casa malla; pudrición radicular; Solanum annun; suelo degradado
ABSTRACT
In Araya Grande - Barranca, paprika (Capsicum annuum L.) cv. Papri King is grown on soils in the process of
degradation; nowadays, for a good harvest, high doses of fertilizers and the constant use of toxic pesticides are
used. The present study aimed to evaluate the effect of the application of humic acids co-inoculated with effective
microorganisms and Trichoderma asperellum, T. viride and T. harzianum on the growth of paprika in a degraded soil.
The experiment was installed in the Los Anitos production center, under mesh house conditions, in 5 (l) pots, under
a random design, with 5 treatments and 6 repetitions. Plant height, leaf and root dry matter were evaluated 60 days
after transplanting. The variables studied presented statistical differences for the Tukey test (α=0.05). The
treatments T1, T2, T3 and T4 presented increases compared to the control (T5) in 25.54%, 17.35%, 14.66% and 12.83%
for plant height; 88.26%, 48.28%, 34.54% and 16.03% for leaf biomass and 45.43%, 30.48%, 25.45% and 22.85% for
root biomass. In addition, no stalk rot was observed in T1, T2, T3 and T4 until the evaluation period. The inputs used
favored leaf and root growth, plant height, protecting them from root rot damage.
Keywords: house malla; root rot; Solanum annun; degraded soil
Cómo citar / Citation: Pineda-Cotrina, M. N., Ramírez-Rojas, C. G., Pineda-Reyes, L. E., Gonzales-Medina, H. K., Zenobio-Tolentino,
Y. Y., Rimac-Torres, O. F., Agurto-Isidro, J. A. & Arone–Gaspar, G. J. (2022). Efecto de la aplicación de ácidos húmicos,
microorganismos eficaces y Trichoderma asperellum, T. viride y T. harzianum en Capcicum annun. QuantUNAB, 1(1), e12.
https://doi.org/10.52807/qunab.v1i1.12
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1. INTRODUCCIÓN
Los valles de Barranca están representados por suelos aluviales (Caramanica et al., 2020), que
por años se han cultivado el algodón y otros cultivos. Aproximadamente, hace 23 años en la
parte alta del valle de Pativilca, en el sector de Araya Grande y otros anexos, se iniciaron la
siembra de páprika con fines de exportación (Agurto Isidro, 2019). En los primeros años de
siembra se lograron altos rendimientos con bajas dosis de fertilización química y, dada las
condiciones edafoclimáticas apropiadas para el cultivo, se promovieron la sobreexplotación de
estos suelos mediante el uso masivo de fertilizantes y pesticidas.
Con el pasar de los años, actualmente se aprecian problemas de salinización, compactación de
suelos, alta mortandad de plantas de páprika, presencia de enfermedades radiculares y
resistencia de plagas a los pesticidas (Agurto Isidro, 2019; Zhang et al., 2017).
La prolongada aplicación de fertilizantes sintéticos por largos periodos, basados principalmente
en Nitrógeno (N), Fósforo (P) y Potasio (K), producen cambios sobre las propiedades del suelo,
en especial sobre las poblaciones microbianas, generando cambios en el contenido de carbono
orgánico del suelo (COS), contenido de Nitrógeno (N), pH, humedad y disponibilidad de
nutrientes, etc. (Krishnaprabu, 2019; Rodríguez Eugenio et al., 2019).
Por otro lado, la eficiencia de uso del fertilizante nitrogenado por los cultivos se halla alrededor
del 50%, por lo que un alto porcentaje del nitrógeno aplicado, principalmente en la forma nítrica
(NO3-), se infiltra y causa problemas de salud en los humanos y animales (Spalding & Kitchen,
1988; Castro-Rincón et al., 2018). Similarmente, el uso prolongado e intensivo de pesticidas
también afecta categóricamente a la biodiversidad del suelo, la producción sostenible y la
seguridad alimentaria, debido a que destruyen las funciones microbianas del suelo y los
procesos bioquímicos, alterando la diversidad y composición de la comunidad microbiana
beneficiosa (Bejger et al., 2021; Gunstone et al., 2021).
La degradación de los suelos de Araya Grande es percibida por los mismos agricultores, quienes
comentan que antaño era normal cosechar entre 7 a 9 toneladas (t) de páprika seca por
hectárea (ha), con bajas dosis de fertilización y con dos o tres aplicaciones para el control de
plagas y enfermedades; en cambio, ahora se logra usando altas dosis de fertilizantes y
aplicaciones periódicas de pesticidas cada vez más tóxicos. Si el cultivo aún se siembra en el
valle, es gracias a la calidad del producto y al precio que pagan los agroexportadores, que oscila
entre S/. 9,5 a S/. 15 por kg.
La páprika de Barranca es considerada por el mercado americano, mexicano y europeo, como
la mejor páprika del mundo y representa actualmente casi el 50% de la superficie cultivada en
el Perú (Agurto Isidro, 2019). La demanda de colorantes naturales en reemplazo de los
sintéticos, en el mercado agroexportador de páprika está en constante crecimiento, por ello, se
busca día a día nuevos colorantes para satisfacer los desafíos y aquellas que puedan cumplir
con las restricciones regulatorias en aplicaciones alimentarias y bioterapéuticas (Luzardo-
Ocampo et al., 2021; Brudzyńska et al., 2021).
Pineda-Cotrina, M. N. et al. 3
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Por estas razones y bondades se emplea la páprika como fuente de colorantes alimenticios
naturales, así como insumo para fabricar la Oleorresina de páprika, que mezclada con el
colorante amarillo del marigold se emplea como aditivo alimenticio para pigmentar la piel y
proveer el color naranja vivo a la yema del huevo, la tonalidad cobriza de la piel del pollo, la
pigmentación de truchas, así como en la manufactura de charcuterías (chorizos, salchicha),
salsas y carnes y, en la industria de cosméticos (Nicho Salas & Valencia Legua, 2009; Restrepo,
2007; Marcano, 2018; INEI, 2020).
Las principales variables influyentes en las exportaciones de páprika son la competencia
internacional y las medidas fitosanitarias (Boza Martinez et al., 2018; Delgado-Zegarra et al.,
2018; Gómez Galarza, 2021), por lo que hace necesario, buscar estrategias de producción más
amigable con el ambiente, empleando insumos accesibles y de bajo costo, a fin de promover
producción sostenible del cultivo, por lo que se planteó evaluar el efecto de aplicaciones de
ácidos húmicos co-inoculado con Microorganismos Eficaces (EM) y Trichoderma en el
crecimiento del ají páprika cultivada en un suelo degradado de Araya Grande.
2. MATERIALES Y MÉTODOS
El ensayo se llevó a cabo entre noviembre de 2019 y marzo de 2020, en condiciones de casa
malla, en el Centro de Investigación Los Anitos, Escuela Profesional de Ingeniería Agrónoma de
la Universidad Nacional de Barranca, localizada en las coordenadas UTM 200371,9789 (Este) y
8809161,218 (Norte) a 77,63 m. s. n. m.
Se empleó el diseño completamente al azar, con 5 tratamientos (T1=200, T2=150, T3=100, T4=50
lha-1 de ácidos húmicos, con adición de 20 lha-1 de EM y 20 lha1 de Trichoderma que contiene
(Trichoderma asperellum, T. viride y T. harzianum) a cada tratamiento y T5 = Sin aplicación), 6
repeticiones y se empleó macetas de 5 litros como unidad experimental. Los tratamientos se
aplicaron en drench (Kirschbaum et al., 2019; Llanos Ríos et al., 2021), una técnica que consiste
en aplicar directamente mezcla de nutrientes diluido en agua sobre el suelo y cerca del cuello
de planta, se aplicaron a los 7, 15 y 30 días después del trasplante. Se evaluaron la altura de
planta, materia seca foliar y radicular de páprika (Capsicum annuum L.) cv. Papri King (Ramos
Aramburu, 2021; Peña B. & Zenner de Polanía, 2015) a los 60 días después del trasplante (ddt)
(Tabla 1).
Tabla 1.
Análisis de caracterización del suelo agrícola de Araya Grande-Barranca
Parámetros
Valores
pH (H2O)
6,09
C.E (dS/m)
2,90
CaCO3 (%)
0,00
MO (%)
0,64
P disponible (mg kg-1)
30,30
K disponible (mg Kg-1)
228,00
CIC (meq 100g-1)
13,76
Ca+2 (meq 100g-1)
10,16
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Mg+2 (meq 100g-1)
1,63
K+ (meq 100g-1)
0,53
Na+ (meq 100g-1)
0,51
Arena (%)
37,00
Limo (%)
43,00
Arcilla (%)
20,00
Clase textural
Fuente: Laboratorio de análisis de suelos, plantas, aguas y fertilizantes – UNALM.
Con fuente de Trichoderma, se empleó Trichops WP de la empresa Productos Biológicos para la
Agricultura EIRL, que contiene Trichoderma (Trichoderma asperellum, T. viride y T. harzianum), >
1,5x1010 conidias/g. Un sobre de 200 g de Trichops WP se activó en un balde de 20 (l) de tapa
hermética, empleando 18 (l) de agua sin cloro con adición de 1 (l) de melaza, 200 g de papa
previamente cocida y disgregada y 100 g de guano de isla, una vez mezclada se tapó y dejó en
condiciones ambientales por 15 días, se empleó a razón de 20 l/ha de caldo activado.
Se empleó EM-compost (Microorganismos eficaces-EM) de la empresa BIOEM S.A.C y como
sugiere el fabricante, antes de aplicar al cultivo se activó empleando un balde de 20 (l) de tapa
hermética, donde se adicionaron 18 (l) de agua sin cloro, 1 (l) de melaza y 1 litro de EM, se
homogeneizó con la ayuda de un listón de madera y se tapó herméticamente por 15 días para
favorecer la multiplicación microbiana, se empleó a razón de 20 (l) de caldo activado por
hectárea.
Los ácidos húmicos se elaboraron empleando humus de lombriz e hidróxido de potasio (90%
de pureza), siguiendo la metodología descrita por Lpez-Salazar et al. (2018). Para su
elaboración se empleó un cilindro de plástico de 200 (l), al cual se adicionó 100 (l) de agua sin
cloro, 30 kg de humus de lombriz y 3 kg de hidróxido de potasio al 90% de pureza, se
homogeneizó empleando un listón de madera durante 7 días, con agitaciones diarias de 30
minutos por la mañana, a mediodía y por la tarde, para facilitar que el hidróxido de potasio
consuma el humus. Se decantó por 4 días, pasado este periodo se realizó el trasiego del
sobrenadante y se guardó en recipientes herméticamente tapados hasta su uso.
Las plantas de páprika cultivadas en este experimento no recibieron fertilización adicional, la
única fuente de nutrientes proviene del suelo y de los insumos utilizados en los tratamientos.
3. RESULTADOS
3.1. Altura de planta de páprika
Los tratamientos que recibieron aplicaciones de ácidos húmicos, EM y Trichoderma, mostraron
efectos significativos para las variables evaluadas y presentaron incrementos para altura de
planta en 25,54% (T1= 55,93 cm), 17,35% (T2= 52,28 cm), 14,66% (T3= 51,08 cm) y 12,83% (T4=
50,26 cm), frente al testigo (T5= 44,55 cm), como se observa en la Tabla 2.
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3.2. Materia seca de biomasa foliar y radicular de páprika
El testigo presentó menor producción de biomasa foliar seca (T5= 13,57 g) y radicular (T5= 1,86
g). En cambio, T1, T2, T3 y T4 estimularon incrementos de 88,26% (25,55 g), 48,28% (20,125 g),
34,54% (18,26 g) y 16,03% (15,74 g) en la biomasa foliar y 45,43% (2,70 g), 30,48% (2,42 g), 25,45%
(2,33 g) y 22,85% (1,86 g) en la biomasa radicular, respectivamente (Tabla 2).
Tabla 2.
Comparación de medias de rango múltiple de Tukey (α=0,05) para altura de planta, peso seco de
biomasa foliar y radicular de páprika en Barranca, 2019-2020
Nota: Las medias que no comparten una letra son significativamente diferentes.
3.3. Diferencias en la sanidad de las raíces de páprika a los 60 ddt
La Figura 1, no contiene aplicación de ácidos húmicos, EM y Trichoderma y se aprecia necrosis
radicular con coloración marrón oscuro, lesión hundida o deprimida que compromete a todo el
tejido vascular y diámetro de la raíz de la zona de crecimiento y la zona pilífera, pero aún no
compromete el cuello de planta.
Tratamiento
Promedio
Altura de planta
(cm)
Peso seco
foliar
(g)
Peso seco
radicular
(g)
T1 = 200 l de AH + 20 l de EM + 20 L de
Trichoderma
55,93a
25,55a
2,705a
T2 = 200 l de AH + 20 l de EM + 20 L de
Trichoderma
52,28a
20,125b
2,427a
T3 = 200 l de AH + 20 l de EM + 20 L de
Trichoderma
51,08a
18,26b
2,3333b
T4 = 200 l de AH + 20 l de EM + 20 L de
Trichoderma
50,267b
15,747b
2,285b
T5 = Sin aplicación
44,55c
13,572c
1,86c
Coeficiente de Variabilidad (%)
6,44
14,17
8,62
Prueba de normalidad
Anderson-Darling, valor p
0,906
0,316
0,180
Prueba de igualdad de varianzas
Levene, valor p
0,06
0,638
0,582
T1 = 200 l de AH + 20 l de EM + 20 L de
Trichoderma
55,93a
25,55a
2,705a
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Figura 1. Raíces sin aplicación de ácidos húmicos
En la Figura 2, se puede apreciar raíces de páprika con aplicación de ácidos húmicos, EM y
Trichoderma, que presenta abundante cabellera radicular y sanidad.
Figura 2. Raíces con aplicación de ácidos húmicos
4. DISCUSIÓN
El análisis de caracterización del suelo reporta que el suelo utilizado en el ensayo es pobre en
materia orgánica (0,6%), medio en K (228 ppm), alto en P (30,3 ppm), posee pH ligeramente
ácido (6,09) y una conductividad eléctrica ligeramente salino (2,90 dS/m), del cual podemos
inferir que es un suelo pobre en nitrógeno, razón por la cual los agricultores emplean dosis
crecientes de fertilización química a base de N, P y K, lo que en el tiempo, además de otras
prácticas inadecuadas, como la escasa reposición de materia orgánica, aplicaciones
descontroladas de pesticidas al suelo y la quema de todo resto de cosecha a campo abierto y
sobre el mismo suelo, viene conllevando a su deterioro, por un lado a la salinización y
compactación y por el otro a la acidificación del suelo en plena Costa peruana (Alva et al., 1976;
Pineda-Cotrina, M. N. et al. 7
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Wallace, 1994; Schroder et al., 2011; Tian & Niu, 2015; Padhi et al., 2020; Nakian et al., 2021)
(Tabla 1).
El umbral de tolerancia del páprika a las sales es de 1,5 dS/m para la salinidad del suelo (ECe) y
un valor umbral de 1,0 dS/m para la salinidad del agua de riego (ECw); valores superiores a
estos umbrales provocan reducción de cosechas, así una salinidad de 2,2 dS/m del suelo reduce
entre el 10% a 25% la cosecha (Warne, 2000; Semiz et al., 2014; Özdemir et al., 2016; NSW-DPI,
2017); por consiguiente, el suelo de Araya Grande con un valor de 2,90 dS/m, tendría efectos
mayores en la reducción de la cosecha. Asimismo, un suelo salino predispone al cultivo al ataque
por Phytophthora capsici, cuyo daño genera muerte de plantas en campo y reduce el
rendimiento (Sanogo, 2004; Chinnusamy & Zhu, 2003)(Tabla 1).
Esto conlleva a pensar que el menor crecimiento de plantas, menor producción de biomasa
foliar y radicular del páprika en el testigo (T5) estarían siendo afectados por las condiciones del
suelo, dado que el suelo empleado presenta un contenido de sales superior al umbral de
tolerancia del cultivo, lo que influye para el adecuado crecimiento y desarrollo de páprika,
además hacen más vulnerables al ataque de pudrición radicular por los patógenos del suelo, de
modo los agricultores deben realizar aplicaciones continuas de agroquímicos para reducir o
controlar su daño (Huez-López et al., 2011; Bojórquez-Quintal et al., 2014)(Tabla 1 y Tabla 2).
El ácido húmico se extrae y comercializa principalmente de la leonardita (Lpez-Salazar et al.,
2018), sin embargo, también es posible extraer de otras fuentes orgánicas como restos de
cosecha compostada y humus de lombriz (Atiyeh et al., 2002; Ywih Ch’ng et al., 2018; Wali et al.,
2019). Asimismo, es posible obtener a partir de los humatos de vermicompost (Reyes-Perez et
al., 2022) y una vez empleado puede ayudar a reducir las tasas de aplicación de fertilizantes, al
mejorar la eficiencia del uso de nutrientes, reemplazar los reguladores de plantas sintéticos,
mejorar la calidad de la fruta, aumentar la tolerancia al estrés hídrico, disminuir la incidencia de
enfermedades, mejorar el crecimiento temprano y la floración, mientras que su composición
química puede ser adecuada para comportarse como portador para introducir
microorganismos benéficos en los sistemas de cultivo (Canellas et al., 2015 ; Baldotto et al., 2016;
Monda et al., 2021).
Asimismo, formulado como bioestimulante con bacterias diazotróficas endófitas y ácidos
húmicos, es una tecnología de bajo costo y aumenta el rendimiento de los cultivos (da Silva et
al., 2017), como del trigo (Huang, 2022). Además, está extensamente documentado que los
ácidos húmicos pueden reducir los impactos negativos del estrés salino, por ello lo consideran
como una herramienta prometedora en la fisiología del estrés de las plantas y en el manejo del
estrés de los cultivos en suelos salinos (Canellas et al., 2020). Esta particularidad, posiblemente
haya favorecido a los tratamientos que recibieron los ácidos húmicos co-inoculado con
Trichoderma y microorganismos eficaces, que permitieron contrarrestar la presencia de sales
en el suelo y diferenciarse en las variables evaluadas con respecto al control (Tabla 2).
Los impactos positivos de los ácidos húmicos sobre los cultivos se han descrito y apreciado
desde 1950 (Cooper et al., 1998). Las experiencias indican que aplicaciones foliares de ácidos
húmicos y ácidos salicílicos en tres cultivares de pimiento, promovieron el crecimiento
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vegetativo, producción y calidad de frutos comparado con el testigo (Ibrahim et al., 2015).
Igualmente, aplicaciones en plantas de tomate mejoraron su crecimiento (Abdellatif et al.,
2017), debido a las funciones del ácido húmico que están implicadas en el transporte de
nutrientes, las H+ -ATPasas de la membrana plasmática, genes/enzimas involucradas en la
asimilación del nitrógeno, rutas hormonales, división celular y desarrollo de las plantas (Nardi
et al., 2021). Aunque, el ácido húmico en nuestro experimento se ha aplicado vía suelo y en la
forma de drench, sus efectos se han dejado notar promoviendo mayor crecimiento de las
plantas de páprika en 25,54% en la dosis más alta y 12,83% en la dosis más baja (Tabla 2).
El ácido húmico se ha utilizado en diversos cultivos, en el maíz promueve la germinación y vigor
en las semillas (Rodrigues et al., 2017; Salem et al., 2017; Nardi et al., 2021), en el pimiento
incrementa el rendimiento en un 13,6% con una reducción significativa en su contenido de
nitrato en un 12% en los frutos y un aumento en el contenido de vitamina C en un 28,6% (Varga
& Ducsay, 2011) cuyas bondades habrían influido también en los tratamientos que recibieron
este insumo y promovieron incrementos en las variables evaluadas (Tabla 2).
El empleo de EM es una técnica accesible y de bajo costo, además de ser fácil de preparar,
contribuyen a la sostenibilidad de los sistemas agrícolas. Su empleo aumenta el rendimiento de
las plantas y promueve el crecimiento de los vegetales (Ju-cheng Zhang et al., 2017). El EM se
han empleado en diversos cultivos y ha mostrado tener efectos positivos, como en la calidad de
fritura de los tubérculos de papa (Sawicka et al., 2021), incremento en crecimiento de plántulas
de pimiento (Capsicum annuum L.) (Liriano González et al., 2021), crecimiento y producción de
calidad de dos cultivares de cebolla (Fawzy et al., 2012), crecimiento de plántulas de tomate
(Calero et al., 2019), aumento de biomasa de la raíz de frijol (Morocho & Leiva-Mora, 2019) y en
el tratamiento de otros vegetales (Calero et al., 2019); (Zhang et al., 2021). Asimismo, Kodippili
& Nimalan (2018) indican que el empleo de EM y compost en siembras de Capsicum annuum
incrementaron el crecimiento y rendimiento de Capsicum; cualidades que también habrían
favorecido sobre las variables evaluadas (Tabla 2).
Los hongos Trichoderma son géneros beneficiosos que se emplean ampliamente para proteger
contra varios organismos fitopatógenos como agentes de biocontrol de bacterias, nematodos
y de hongos, al inhibir su crecimiento mediante el hiperparasitismo, competencia por
nutrientes, espacio y antibiosis (Khalid, 2017; Sood et al., 2020). Por otro lado, el Trichoderma
puede colonizar raíces de las plantas y estimular resistencia al estrés biótico (enfermedades de
las plantas) y abiótico (salinidad y sequía), debido a la producción de metabolitos secundarios,
enzimas y proteínas promotores de crecimiento de plantas, solubilización de fosfato,
producción de auxina, y sideróforos, los que promueven el crecimiento y desarrollo de las
plantas (Brotman et al., 2013; Zhang et al., 2018; Zhang et al., 2017; Sharma et al., 2017).
Asimismo, Sánchez-Montesinos et al. (2020) indican que Trichoderma aggressivum f. europaeum,
en condiciones de invernadero y vivero, promueven crecimiento de raíces de plántulas de
pimiento y tomate, bondades que pudieron haber favorecido en promover el crecimiento foliar
y radicular de la paprika.
Pineda-Cotrina, M. N. et al. 9
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Otro ensayo realizado en el pimentón, en un pariente de la páprika es susceptible al daño de
plagas y enfermedades, siendo Sclerotium spp. una de las enfermedades más comunes y que al
ser enfrentado en ensayos in vitro y en vivero con cepas de Trichoderma spp., lograron controlar
superior al 90% y además promovió mayor desarrollo radical y foliar en las plantas de pimiento.
En nuestro experimento evaluado a los 60 días apreciamos en las raíces de las plantas de
páprika del tratamiento control (T5) invasión y daño radicular ocasionado por patógenos. Al
respecto, aunque la parte aérea de la planta hasta el momento de la evaluación no mostraron
síntomas de daño de pudrición radicular, igualmente el cuello de planta donde habitualmente
se aprecia el estrangulamiento debido al daño radicular, tampoco se visualizó, sin embargo, al
examinar las raíces se apreciaron que las raicillas en la zona de crecimiento y la zona pilífera
presentaban necrosis, lesión hundida o deprimida que compromete a todo el diámetro de la
raíz (Uribe-Lorío et al., 2014; Amasifuen Hernández et al., 2019).
Diversos agentes biológicos causan la pudrición radicular a la páprika, entre ellos Phytophthora
spp., Pythium spp., Rhizoctonia solani, Fusarium sp. y otros, (Obregón et al., 2016; Amasifuen
Hernández et al., 2019), los que quedan por dilucidar. En cambio, los tratamientos que
recibieron AH, EM y Trichoderma no mostraron daños de pudrición radicular (Pineda-Insuasti et
al., 2017; Siddiquee, 2017) y presentan apropiada cabellera radicular y sanidad (Tabla 2).
El Trichoderma se emplea en la agricultura y en el ambiente por poseer diversas funciones
(Rajesh et al., 2016; Nakkeeran et al., 2018; Zin & Badaluddin, 2020; Kumar & Khurana, 2021), así
como en el manejo de biocontrol de diversas enfermedades (Singh et al., 2018; Thakur, 2021).
La inoculación de Trichoderma harzianum sobre la pudrición radicular de plántulas de pimiento
redujo su daño y además promovió su crecimiento (Sofian et al., 2013; Tančić-Živanov et al.,
2020; Bader et al., 2020; Miguel-Ferrer et al., 2021), igualmente el uso de Trichoderma asperellum
cepa T34, tuvo una alta efectividad en el control de Phytophthora capsici en pimiento (Segarra et
al., 2013; Herrera-Parra et al., 2017), similarmente, la aplicación de Trichoderma spp. en pimiento,
controló el daño por Rhizoctonia (Ali, 2021). Otra experiencia indica que el empleo de
Trichoderma virens en plantaciones de Vigna radiata (L.) promovió su crecimiento (Inayati et al.,
2021). Creemos que estas funciones diversas permitieron proteger a las raíces de las plantas de
páprika de la pudrición radicular en los tratamientos donde se emplearon estos insumos (Figura
1 y 2).
El Trichoderma también se ha empleado en la tolerancia de los cultivos a la salinidad, una
experiencia es el uso de Trichoderma harzianum sobre la respuesta en arroz (Oryza sativa L.) a
diferentes niveles de estrés salino, donde el Trichoderma reduce los efectos nocivos de estrés
salino y mejora su crecimiento y reproducción del cultivo (Rawat et al., 2012). Resultados
similares se lograron con la cepa Q1 de T. asperellum que aplicado en Cucumis sativus L.,
promovió positivamente el crecimiento de las plántulas y alivió la supresión de crecimiento
inducida por el estrés salino, su respuesta se confirmó mediante los cambios en el crecimiento
y parámetros bioquímicos y fisiológicos (Qi & Zhao, 2013). Por todas las bondades beneficiosas
descritas sobre el Trichoderma, actualmente es promovida para su empleo como una alternativa
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en los sistemas de manejo integrado de enfermedades de plantas (Peña-Tovar & Pavone-
Maniscalco, 2020; Liu et al., 2020)
Finalmente, tanto el ácido húmico, el EM y el Trichoderma, mejoran el efecto depresivo de la
salinidad de los suelos, al mejorar la salud biológica del suelo, mejorar la actividad enzimática
del suelo, actuar como agentes bactericidas del suelo y fungicida de las plantas. Al aumentar el
crecimiento de las raíces mejoran el crecimiento y la nutrición de las plantas e inducen así al
cultivo y a su tolerancia a las sales (Khaled & Fawy, 2011; Ouni et al., 2014; Canellas et al., 2015;
de Melo et al., 2016; Sharma et al., 2017; Salem et al., 2017; Abu-Qaoud et al., 2021; Huang, 2022),
efectos que se han dejado notar en el incremento de altura de planta, biomasa foliar, radicular
y sanidad de las raíces de las plantas de páprika. (Tabla 2) (Figura 1 Y 2).
CONCLUSIONES
El empleo de ácidos húmicos co-inoculado con Trichoderma y microorganismos eficaces (EM),
promovieron el crecimiento foliar, radicular y altura de planta de páprika. Además, protegieron
a las raíces de daños de pudrición radicular.
El empleo de los ácidos húmicos co-inoculado con Trichoderma y microorganismos eficaces
(EM), muestran ser una alternativa agroecológica para la producción de páprika en suelos con
presencia de sales.
FINANCIAMIENTO
Este trabajo fue subvencionado por la II Convocatoria de Iniciación Científica para grupos
estudiantiles dedicados a la Investigación en Ciencia, Tecnología e Innovación (GEI), a cargo de
la Vicepresidencia de Investigación de la Universidad Nacional de Barranca, con Resolución de
Comisión Organizadora N° 552-2019-UNAB.
CONFLICTO DE INTERESES
No existe ningún tipo de conflicto de interés relacionado con la materia del trabajo.
CONTRIBUCIÓN DE AUTORÍA
Conceptualización: Pineda-Cotrina, M. N., Ramírez-Rojas, C. G., Pineda-Reyes, L. E., Gonzales-
Medina, H. K. y Zenobio-Tolentino, Y. Y.
Curación de datos: Pineda-Cotrina, M. N., Ramírez-Rojas, C. G. y Pineda-Reyes, L. E.
Análisis formal: Zenobio-Tolentino, Y. Y., Rimac-Torres, O. y Agurto-Isidro, J.
Investigación: Arone–Gaspar, G. J., Pineda-Cotrina, M. N., Ramírez-Rojas, C. G., Pineda-Reyes, L.
E. y Gonzales-Medina, H. K.
Metodología: Pineda-Cotrina, M. N., Ramírez-Rojas, C. G., Pineda-Reyes, L. E., Gonzales-
Medina, H. K. y Zenobio-Tolentino, Y. Y.
Supervisión: Rimac-Torres, O. F., Agurto-Isidro, J. A. y Arone–Gaspar, G. J.
Pineda-Cotrina, M. N. et al. 11
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DOI: 10.52807/qunab.v1i1.12
Redacción-borrador original: Rimac-Torres, O. F., Agurto-Isidro, J. A. y Arone–Gaspar, G. J.
Redacción-revisión y edición: Pineda-Cotrina, M. N., Ramírez-Rojas, C. G., Pineda-Reyes, L. E.,
Gonzales-Medina, H. K. y Zenobio-Tolentino, Y. Y.
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